O fracionamento de inibidores da ACCase e a adição de glyphosate melhoram o controle de capim-amargoso perenizado

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n2p657

Palavras-chave:

Clethodim, Digitaria insularis (L.) Fedde, Inibidores da ACCase, Quizalofop, Aplicação sequencial.

Resumo

O capim-amargoso resistente ao glyphosate é difícil de controlar, principalmente quando perenizado, e estratégias que aumentem a eficiência de controle dessas plantas e preservem a vida útil dos graminicidas são necessárias. Portanto, o presente estudo teve como objetivo responder as seguintes perguntas: (i) O fracionamento de doses de inibidores da ACCase melhora o controle de capim-amargoso perenizado? (ii) Alternar os grupos químicos ciclohexanodionas (DIMs) e ariloxifenoxipropanoatos (FOPs) melhora o controle de capim-amargoso perenizado, e a ordem de sua aplicação afeta a eficiência do controle de capimamargoso? (iii) A adição de glyphosate a inibidores da ACCase melhora o controle de capim-amargoso perenizado resistente aos inibidores da 5-enol-piruvil-shiquimato-3-fosfato-sintase? Foram realizados dois experimentos de campo (I e II) em 2018 e repetidos em 2019. No experimento I, os tratamentos incluíram aplicação única ou fracionada de clethodim + quizalofop-P-etílico (216 + 108 g i.a. ha-1), clethodim (216 g i.a. ha-1), e quizalofop-P-tefuril (108 g i.a. ha-1), aplicação de clethodim seguida de quizalofop-P-tefuril e viceversa, além de um tratamento controle. No experimento II, os tratamentos incluíram à aplicação única ou fracionada de clethodim + quizalofop-P-etílico (216 + 108 g i.a. ha-1) e clethodim (108 g i.a. ha-1), isolados ou associados ao glyphosate, além de um tratamento controle. Em ambos os experimentos o intervalo entre as aplicações fracionadas foi de 7 dias. Determinou-se à porcentagem de controle, o número de perfilhos por planta, e à altura das plantas de capim-amargoso. Em comparação com a aplicação não fracionada, o fracionamento de clethodim + quizalofop-P-etílico e clethodim aumentou o controle em 20- 24 and 25-30%, respectivamente. O clethodim fracionado apresentou maior controle, e menor rebrote e altura das plantas de capim-amargoso. A ordem de aplicação dos grupos químicos FOPs e DIMs afetou a eficiência do controle, e melhores resultados foram obtidos com a aplicação de quizalofop-P-tefuril seguido de clethodim. A adição de glyphosate potencializa a ação dos graminicidas, principalmente quando fracionados, mesmo sobre capim-amargoso resistente, com acréscimo de 26% na eficiência e resultando em controle satisfatório ( > 80%).

Métricas

Carregando Métricas ...

Biografia do Autor

Guilherme Mendes Pio de Oliveira, Universidade Estadual de Londrina

Aluno do Curso de Doutorado do Programa de Pós-Graduação em Agronomia, Universidade Estadual de Londrina, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Marcelo Augusto de Aguiar e Silva, Universidade Estadual de Londrina

Prof. Dr., Programa de Pós-Graduação em Agronomia, Departamento de Agronomia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Giliardi Dalazen, Universidade Estadual de Londrina

Prof. Dr., Programa de Pós-Graduação em Agronomia, Departamento de Agronomia, UEL, Londrina, PR, Brasil.

Referências

Andrade, A., Tulmann, A., Neto, Tcacenco, F. A., Marschalek, R., Pereira, A., Oliveira, A. M., Neto,... Noldin, J. A. (2018). Development of rice (Oryza sativa) lines resistant to aryloxyphenoxypropionate herbicides through induced mutation with gamma rays. Plant Breeding, 137(3), 364-369. doi: 10.1111/pbr.12592

Beckie, H. J., & Tardif, F. J. (2012). Herbicide cross resistance in weeds. Crop Protection, 35(1), 15-28. doi: 10.1016/j.cropro.2011.12.018

Bromilow, R. H., Chamberlain, K., & Evans, A. A. (1990). Physicochemical aspects of phloem translocation of herbicides. Weed Science, 38(3), 305-314. doi: 10.1017/S0043174500056575

Burton, J. D., Gronwald, J. W., Keith, R. A., Somers, D. A., Gengenbach, B. G., & Wyse, D. L. (1991). Kinetics of inhibition of acetyl-coenzyme A carboxylase by sethoxydim and haloxyfop. Pesticide Biochemistry and Physiology, 39(2), 100-109. doi: 10.1016/0048-3575(91)90130-E

Burton, J. D., Gronwald, J. W., Somers, D. A., Gengenbach, B. G., & Wyse, D. L. (1989). Inhibition of corn acetyl-CoA carboxylase by cyclohexanedione and aryloxyphenoxypropionate herbicides. Pesticide Biochemistry and Physiology, 34(1), 76-85. doi: 10.1016/0048-3575(89)90143-0

Carr, J. E., Davies, L. G., Cobb, A. H., & Pallett, K. E. (1986). Uptake, translocation and metabolism of fluazifop butyl in Setaria viridis. Annals of Applied Biology, 108(1), 115-123. doi: 10.1111/j.1744-7348 .1986.tb01972.x

Cobb, A. H., & Reade, J. P. H. (2010). Herbicides and plant phisiology. London: Wiley.

Fadin, D. A., Tornisielo, V. L, Barroso, A. A. M., Ramos, S., Reis, F. C. dos, & Monquero, P. A. (2018). Absorption and translocation of glyphosate in Spermacoce verticillata and alternative herbicide control. Weed Research, 58(5), 389-396. doi: 10.1111/wre.12329

Fleck, N. G. (1994). Doses reduzidas de herbicidas de pós-emergência para controle de papua em soja. Planta Daninha, 12(1), 21-28. doi: 10.1590/S0100-83581994000100004

Gazola, T., Belapart, D., Castro, E. B., Cipola, M. L., F., & Dias, M. F. (2016). Características biológicas de Digitaria insularis que conferem sua resistência à herbicidas e opções de manejo. Científica, 44(4), 557-567. doi: 10.15361/1984-5529.2016v44n4p557-567

Gilo, E. G., Mendonça, C. G., Santo, T. L. E., & Teodoro, P. E. (2016). Alternatives for chemical management of sourgrass. Bioscience Journal, 32(4), 881-889. doi: 10.14393/BJ-v32n4a2016-32786

Gomes, H. L. L., Sambatti, V. C., & Dalazen, G. (2020). Sourgrass control in response to the association of 2,4-D to Accase inhibitor herbicides. Bioscience Journal, 36(4), 1126-1136. doi: 10.14393/BJ-v36n4a 2020-47895

Gomes, L. J. P., Santos, J. I., Gasparino, E. C., & Correia, N. M. (2017). Chemical control and morphoanatomical analysis of leaves of different populations of sourgrass. Planta Daninha, 35, e017158021. doi: 10.1590/S0100-83582017350100008

Heap, I. (2021). The international survey of herbicide resistant weeds. Retrieved from www.weedscience.com

Heap, I., & Duke, S. O. (2018). Overview of glyphosate resistant weeds worldwide. Pest Management Science, 74(5), 1040-1049. doi: 10.1002/ps.4760

Lancaster, Z. D., Norsworthy, J. K., & Scott, R. C. (2018). Sensitivity of grass crops tolow rates of quizalofop. Weed Technology, 32(3), 304-308. doi: 10.1017/wet.2018.14

Lopes Ovejero, R. F., Takano, H. K., Nicolai, M., Ferreira, A., Melo, M. S. C., Cavenaghi, A. L.,... Oliveira, R. S. (2017). Frequency and dispersal of glyphosate resistant sourgrass (Digitaria insularis) populations across Brazilian agricultural production areas. Weed Science, 65(2), 285-294. doi: 10.1017/wsc.2016.31

Mendonça, G. S., Martins, C. C., Martins, D., & Costa, N. V. (2014). Ecophysiology of seed germination in Digitaria insularis ((L.) Fedde). Revista Ciência Agronômica, 45(4), 823-832. doi: 10.1590/S1806-669 02014000400021

Nandula, V. K., Poston, D. H., Reddy, K. N., & Koger, C. H. (2007). Formulation and adjuvant effects on the absorption and translocation of 14C-clethodim in wheat (Triticum aestivum L.). Weed Biology and Management, 7(4), 226-231. doi: 10.1111/j.1445-6664.2007.00260.x

Powles, S. B., & Yu, Q. (2010). Evolution in action: plants resistant to herbicides. Annual Review of Plant Biology, 61(1), 317-347. doi: 10.1146/annurev-arplant-042809-112119

R Core Team (2021). R: a language and environment for statistical computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing.

Radwan, D. E. M., & Soltan, D. M. (2012). The negative effects of clethodim in photosynthesis and gas exchange status of maize plants are ameliorated by salicylic acid pretreatment. Photosynthetica, 50(2), 171-179. doi: 10.1007/s11099-012-0016-8

Rendina, A. R., Craig-Kennard, A. C., Beaudoin, J. D., & Breen, M. K. (1990). Inhibition of acetyl-coenzyme A carboxylase by two classes of grass selective herbicides. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 38(5), 1282-1287. doi: 10.1021/jf00095a029

Rodrigues, B. N., & Almeida, F. S. (2018). Guia de herbicidas. Londrina: Produção Independente.

Shaner, D. L. (2014). Herbicide handbook. Champaign: Lawrence.

Silva, W. T., Karam, D., Vargas, L., & Silva, A. F. (2017). Alternativas de controle químico para capim amargoso (Digitaria insularis) na cultura do milho. Revista Brasileira de Milho e Sorgo, 16(3), 578-586. doi: 10.18512/1980-6477/rbms.v16n3p578-586

Silveira, H. M., Langaro, A. C., Álcantara-de la Cruz, R., Sediyama, T., & Silva, A. A. (2018). Glyphosate efficacy on sourgrass biotypes with suspected resistance collected in GR-crop fields. Acta Scientiarum Agronomy, 40(1), 69-74. doi: 10.4025/actasciagron.v40i1.35120

Takano, H. K., Melo, M. S. C., Ovejero, R. F. L., Westra, P. H., Gaines, T. A., & Dayan, F. E. (2020). Trp2027Cys mutation evolves in Digitaria insularis with cross resistance to ACCase inhibitors. Pesticide Biochemistry and Physiology, 164(1), 1-6. doi: 10.1016/j.pestbp.2019.12.011

Takano, H. K., Oliveira, R. S., Jr., Constantin, J., Silva, V. F. V., & Mendes, R. R. (2018). Chemical control of glyphosate resistant goosegrass. Planta Daninha, 36, e018176124. doi: 10.1590/S0100-8358201836 0100055

Ye, F., Ma, P., Zhang, Y. Y., Li, P., Yang, F., & Fu, Y. (2018). Herbicidal activity and molecular docking study of novel ACCase inhibitors. Frontiers in Plant Science, 9(1850), 1-10. doi: 10.3389/fpls.2018.018 50

Downloads

Publicado

2022-02-25

Como Citar

Oliveira, G. M. P. de, Silva, M. A. de A. e, & Dalazen, G. (2022). O fracionamento de inibidores da ACCase e a adição de glyphosate melhoram o controle de capim-amargoso perenizado. Semina: Ciências Agrárias, 43(2), 657–674. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n2p657

Edição

Seção

Artigos

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)