Uso de bioestimulantes em capim-elefante cultivar Napier

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n1p91

Palavras-chave:

Adubação foliar, Biorreguladores, Degradabilidade, Micronutrientes, Senescência.

Resumo

Objetivou-se avaliar o crescimento, a produtividade, a composição bromatológica e a degradabilidade in situ do capim-elefante cv. Napier (Pennisetum purpureum). Foram efetuados cinco diferentes protocolos de pulverização com bioestimulantes: Controle - nenhuma aplicação, 1BR - biorregulador aos 7 dias; 2BR - biorregulador aos 7 dias, biorregulador e adubação foliar aos 20 dias; 2BR2 - biorregulador aos 7 dias, biorregulador e adubação foliar aos 20 dias, inibidor de etileno aos 30 dias; 3BR - biorregulador aos 7 dias, biorregulador e adubação foliar aos 20 dias, inibidor de etileno e biorregulador aos 30 dias. Foi realizado o corte de uniformização do capim a 15 centímetros de altura, sendo a colheita efetuada aos 70 dias de rebrota. A área experimental foi dividida em dois blocos de acordo com a declividade. Foram utilizadas 90 parcelas, totalizando 4.608 m2 de área. Cada parcela foi composta por quatro linhas de quatro metros cada, com espaço entrelinhas de 80 centímetros. Os dados foram avaliados quanto à composição química, características morfológicas e digestibilidade da forragem. O protocolo 3BR, com mais aplicações à base de biorreguladores, resultou em dossel maior (9,78%) e maior altura de caule (9,58%) em relação ao grupo controle, bem como os tratamentos 2BR e 2BR2 promoveram aumento da altura de caule em 6,5% se comparado com tratamento controle. A melhoria no valor nutricional do Pennisetum purpureum cv. Napier se deu em função da elevação no teor de proteína bruta (PB) de 17,55% em relação ao grupo controle com o protocolo 3BR. Houve aumento da degradabilidade efetiva da matéria seca (MS) para os tratamentos 2BR2 e 3BR. A aplicação dos protocolos de bioestimulantes aumentou a degradabilidade potencial da fibra em detergente neutro (FDN) (+4,1%), com maior resposta para o tratamento 2BR2 em relação ao tratamento controle. Os protocolos de bioestimulantes elevam a altura do dossel e do caule e incrementam o teor de PB. A aplicação de biorregulador, associado à adubação foliar e inibidor de etileno melhora a degradabilidade efetiva da MS e FDN e a degradabilidade potencial da FDN do Pennisetum purpureum cv. Napier cortado aos 70 dias de rebrota.

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Biografia do Autor

Estela Pezenti, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia

Dra. em Zootecnia, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia, UESB, Itapetinga, BA, Brasil.

Marcio dos Santos Pedreira, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia

Prof. Dr., Departamento de Tecnologia Rural e Animal, UESB, Itapetinga, BA, Brasil.

Sérgio Augusto de Albuquerque Fernandes, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia

Prof. Dr., Departamento de Tecnologia Rural e Animal, UESB, Itapetinga, BA, Brasil.

Moizéis Silva Nery, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia

Prof. Dr., Departamento de Tecnologia Rural e Animal, UESB, Itapetinga, BA, Brasil.

André da Cunha Peixoto Vitor, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia

M.e Dr. em Zootecnia, UESB, Itapetinga, BA, Brasil.

Abias Santos Silva, Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária

Pesquisador Pós-Doutorado, Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, EMBRAPA Gado de Leite, Juiz de Fora, MG, Brasil.

Barbara Louise Pacheco Ramos, Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia

M.e Dra. em Zootecnia, UESB, Itapetinga, BA, Brasil.

Referências

Abrantes, F. L., Sá, M. E., Souza, L. C. D., Silva, M. P., Simidu, H. M., Andreotti, M.,... Arruda, N. (2011). Uso de regulador de crescimento em cultivares de feijão de inverno. Pesquisa Agropecuária Tropical, 41(2), 148-154. doi: 10.5216/pat.v41i2.8287

Association of Official Analytical Chemists (1995). Official methods of analysis (16nd ed.). Arlington, VA: AOAC.

Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária (2006). Sistema Brasileiro de Classificação de Solos (2a ed.). Rio de Janeiro: Embrapa Solos.

Brennecke, K., Ferraz, F. M., & Simões, T. R. (2015). Germinação de sementes de Brachiaria decumbens sob diferentes concentrações de biorregulador. Revista Acadêmica Ciência Animal, 13(n. cont.), 145-151. doi: 10.7213/academica.13.FC.AO15

Caldas, L. S., Haridasan, P., & Ferreira, M. E. (1990). Meios nutritivos. In A. C. Torres, L. S. Caldas, Técnicas e aplicações da cultura de tecidos de plantas (pp. 37-70). Brasília: ABCTP; Embrapa CNPH.

Cappelle, E. R., Valadares, S. C., Fº., Silva, J. F. C., & Cecon, P. R. (2001). Estimativas do valor energético a partir de características químicas e bromatológicas dos alimentos. Revista Brasileira de Zootecnia, 30(6), 1837-1856. doi: 10.1590/S1516-35982001000700022

Cardona, E. M., Rios, L. A., & Peña, J. D. (2012). Disponibilidad de Variedades de Pastos y Forrajes como Potenciales Materiales Lignocelulósicos para la Producción de Bioetanol en Colombia. Información Tecnológica, 23(6), 87-96. doi: 10.4067/S0718-07642012000600010

Castro, P. R. C., Carvalho, M. E. A., Mendes, A. C. C. M., & Angelini, B. G. (2017). Manual de estimulantes vegetais: nutrientes, biorreguladores, bioestimulantes, bioativadores, fosfitos e biofertilizantes na agricultura tropical. Ouro Fino, MG: Agronômica Ceres.

Chitarra, M. I. F., & Chitarra, A. B. (2005). Pós-colheita de frutos e hortaliças: fisiologia e manuseio (2a ed. Rev. Atual. e Ampl.). Lavras: UFLA.

Cunha, R. G., Lima, S. F., Alvarez, R. D. C. F., Simon, C. A., & Contardi, L. M. (2016). Arranjo espacial e biorregulador de crescimento na produtividade de milho. Revista de Ciências Agroambientais, 14(2), 24-31. doi: 10.5327/rcaa.v14i2.1263

Dantas, A. C. V. L., Queiroz, J. M. O., Vieira, E. L., & Almeida, V. O. (2012). Effect of gibberellic acid and the biostimulant stimulate® on the initial growth of tamarind. Revista Brasileira de Fruticultura, 34(1), 8-14. doi: 10.1590/S0100-29452012000100004

Emerenciano, J. V., Neto, Bezerra, M. G. D. S., França, A. F. D., Aguiar, E. M. D., & Difante, G. D. S. (2019). Características estruturais e produtivas em híbridos intraespecíficos e interespecíficos de capim-elefante. Ciência Animal Brasileira, 20(e-46788), 1-11. doi: 10.1590/1809-6891v20e-46788

Faria, M. B., Morenz, M. J. F., Paciullo, D. S. C., Lopes, F. C. F., & Gomide, C. A. M. (2018). Growth and bromatological characteristics of Brachiaria decumbens and Brachiaria ruziziensis under shading and nitrogen. Revista Ciência Agronômica, 49(3), 529-536. doi: 10.5935/1806-6690.20180060

Ferreira, E. A., Abreu, J. G. D., Martinez, J. C., Braz, T. G. D. S., & Ferreira, D. P. (2018). Cutting ages of elephant grass for chopped hay production. Pesquisa Agropecuária Tropical, 48(3), 245-253. doi: 10.15 90/1983-40632018v4851569

Ferreira, M. M. R., Ferreira, L. H. Z., & Bolonhezi, A. C. (2013). Reguladores vegetais aplicados no sulco de plantio em cultivares de cana-de-açúcar. Scientia Agraria, 14(2), 59-64. doi: 10.5380/rsa.v14i2.40891

Fioreli, A. B., Ziech, M. F., Fluck, A. C., Gerei, J. C., Col, D., Berns, L., & Costa, O. D. (2018). Valor nutritivo de gramíneas do gênero Cynodon consorciadas com amendoim forrageiro. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 70(6), 1970-1978. doi: 10.1590/1678-4162-10048

Galindo, F. S., Buzetti, S., Teixeira, M. C. M., Fº., Dupas, E., & Carvalho, F. D. C. (2018). Manejo da adubação nitrogenada no capim-mombaça em função de fontes e doses de nitrogênio. Revista de Ciências Agrárias, 41(4), 31-40. doi: 10.19084/RCA18131

Hall, M. B., Hoover, W. H., Jennings, J. P., & Webster, T. K. M. (1999). A method for partitioning neutral detergent-soluble carbohydrates. Journal of Science Food and Agriculture, 79(15), 2079-2086. doi: 10.1002/(SICI)1097-0010(199912)79:15<2079::AID-JSFA502>3.0.CO;2-Z

Harper, J. E. (1984). Uptake of organic nitrogen forms by roots and leaves. In R. D. Hauck (Ed.), Nitrogen in crop production (pp. 165-170). Wisconsin: American Society of Agronomy.

Instituto Nacional de Meteorologia (2019). Estações e dados/dados metereológicos. Recuperado de http://www.inmet.gov.br/portal/index.php?r=estacoes/estacoesAutomaticas

Jannin, L., Arkoun, M., Etienne, P., Laîné, P., Goux, D., Garnica, M., & Houdusse, F. (2013). Brassica napus growth is promoted by Ascophyllum nodosum seaweed extract: microarray analysis and physiological characterization of N, C, and S metabolisms. Journal of Plant Growth Regulation, 32(1), 31-52. doi: 10. 1007/s00344-012-9273-9

Jannin, L., Arkoun, M., Ourry, A., Laîné, P., Goux, D., Garnica, M., & Houdusse, F. (2012). Microarray analysis of humic acid effects on Brassica napus growth: involvement of N, C and S metabolisms. Plant and Soil, 359(1-2), 297-319. doi: 10.1007/s11104-012-1191-x

Khan, W., Rayirath, U. P., Subramanian, S., Jithesh, M. N., Rayorath, P., Hodges, D. M., & Prithiviraj, B. (2009). Seaweed extracts as biostimulants of plant growth and development. Journal of Plant Growth Regulation, 28(4), 386-399. doi: 10.1007/s00344-009-9103-x

Krouk, G. (2016). Hormones and nitrate: a two-way connection. Plant Molecular Biology, 91(6), 599-606. doi: 10.1007/s11103-016-0463-x

Mehez, A. Z., & Orskov, E. R. (1977). A study of the artificial fibre bag technique for determining the digestibility of feeds in the rumen. Journal of Agricultural Science, 88(3), 645-650. doi: 10.1017/S0021859600037321

Minson, D. J. (1990). Forage in ruminant nutrition. San Diego: Academic Press.

Morais, R. F., Souza, B. J., Leite, J. M., Soares, L. H. B., Alves, B. J. R., Boddey, R. M., & Urquiaga, S. (2009). Elephant grass genotypes for bioenergy production by direct biomass combustion. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 44(2), 133-140. doi: 10.1590/S0100-204X2009000200004

Mortate, R. K., Nascimento, E. F., Gonçalves, E. G. S., & Lima, M. W. P. (2018). Resposta do milho (Zea mays L.) à adubação foliar e via solo de nitrogênio. Revista de Agricultura Neotropical, 5(1), 1-6. doi: 10.32404/rean.v5i1.2202

Nardi, S., Pizzeghello, D., Schiavon, M., & Ertani, A. (2016). Plant biostimulants: physiological responses induced by protein hydrolyzed-based products and humic substances in plant metabolism. Scientia Agricola, 73(1), 18-23. doi: 10.1590/0103-9016-2015-0006

Oliveira, W. F., Lima, E. M., Gomes, D. I., Alves, K. S., Santos, P. M., Azevedo, G. S., & Mezzomo, R. (2019). Agronomic performance of Marandu grass treated with plant growth biostimulants in the Amazon biome. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 71(2), 603-612. doi: 10.1590/1678-4162-10369

Orskov, E. R., & McDonald, I. (1979). The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science, 92(2), 499-503. doi: 10.1017/S0021859600063048

Paradikovic, N., Vinkovic, T., Vinkovic Vrcek, I., Zuntar, I., Bojic, M., & Medic-Saric, M. (2011). Effect of natural biostimulants on yield and nutritional quality: an example of sweet yellow pepper (Capsicum annuum L.) plants. Journal of the Science of Food and Agriculture, 91(12), 2146-2152. doi: 10.1002/jsfa .4431

Pereira, A. V., Ledo, F. D. S., Morenz, M. J. F., Leite, J. L. B., Brighenti, A. M., Martins, C. E., & Machado, J. C. (2016). BRS Capiaçu: cultivar de capim-elefante de alto rendimento para produção de silagem. (Comunicado Técnico). Juiz de Fora: EMBRAPA Gado de Leite.

Pricinotto, L. F., Zucareli, C., Ferreira, A. S., Spolaor, L. T., & Fonseca, I. C. D. B. (2019). Yield and biometric characteristics of maize submitted to plant population and trinexapac-ethyl doses. Revista Caatinga, 32(3), 667-678. doi: 10.1590/1983-21252019v32n311rc

Ribeiro, L. O., Vieira, E. L., Girardi, E. A., Carvalho, E. V., & Ribeiro, M. O. (2017). Bioestimulante vegetal na produção de mudas de tabaco. Magistra, 29(2), 200-207. doi: https://magistraonline.ufrb.edu.br/index. php/magistra/article/view/431

Santos, F. A. P. (1993). Manejo de pastagens de capim-elefante. In A. M. Peixoto, J. C. Moura, & V. P. Faria (Eds.), Volumosos para bovinos (pp. 1-20). Piracicaba, SP: FEALQ.

Silva, M. A., Cato, S. C., & Costa, A. G. F. (2010). Produtividade e qualidade tecnológica da soqueira de cana-de-açúcar submetida à aplicação de biorregulador e fertilizantes líquidos. Ciência Rural, 40(4), 774-780. doi: 10.1590/S0103-84782010005000057

Skoog, F., & Miller, C. O. (1957). Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultures in vitro. Symposia of the Society for Experimental Biology, 54(11), 118-130. Recovered from http:// europepmc.org/article/med/13486467

Sniffen, C. J., O’Connor, J. D., & Van Soest, P. J. (1992). A net carbohydrate and protein system for evaluating cattle diets: II- Carbohydrate and protein availability. Journal and Animal Science, 70(11), 3562-3577. doi: 10.2527/1992.70113562x

Statistical Analysis System Institute (2001). STAT user’s guide: statistics version 8.2., Cary, NC: SAS Institute.

Stida, W. F., Daher, R. F., Viana, A. P., Vidal, A. K. F., Freitas, R. S., Silva, V. B.,… Furlani, E. P. (2018). Estimation of genetic parameters and selection of elephant-grass (Pennisetum purpureum Schumach) for forage production using mixed models. Chilean Journal of Agricultural Research, 78(2), 198-204. doi: 10.4067/S0718-58392018000200198

Taiz, L., & Zeiger, E. (2017). Fisiologia e desenvolvimento vegetal (6a ed.). Porto Alegre: Artmed.

Van Soest, P. J., Robertson, J. B., & Lewis, B. A. (1991). Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polyssacarides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science, 74(10), 3583-3597. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(91)78551-2

Wilson, J. R. (1993). Forage cell wall structure and digestibility. In Wilson J. R. (Ed.) Organization of forage plant tissues (pp. 1-32). Madison: American Society of Agronomy.

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Publicado

2022-01-10

Como Citar

Pezenti, E., Pedreira, M. dos S., Fernandes, S. A. de A., Nery, M. S., Vitor, A. da C. P., Silva, A. S., & Ramos, B. L. P. (2022). Uso de bioestimulantes em capim-elefante cultivar Napier. Semina: Ciências Agrárias, 43(1), 91–106. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2022v43n1p91

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