Use of biostimulants in elephant grass cv. Napier

Estela Pezenti, Marcio dos Santos Pedreira, Sérgio Augusto de Albuquerque Fernandes, Moizéis Silva Nery, André da Cunha Peixoto Vitor, Abias Santos Silva, Barbara Louise Pacheco Ramos

Abstract


This study was developed to examine the growth, yield, chemical composition and in situ degradability of elephant grass cv. Napier (Pennisetum purpureum). Five spraying protocols with biostimulants were tested, namely, Control - no application; 1BR - bioregulator at seven days; 2BR - bioregulator at seven days + bioregulator and foliar fertilization at 20 days; 2BR2 - bioregulator at seven days + bioregulator and foliar fertilization at 20 days + ethylene inhibitor at 30 days; and 3BR - bioregulator at seven days + bioregulator and foliar fertilization at 20 days + ethylene inhibitor and bioregulator at 30 days. The grass was cut evenly at a height of 15 cm and harvested at 70 days of regrowth. The experimental area was divided into two blocks according to the slope. Ninety plots were used, totaling an area of 4,608 m2. Each plot was composed of four 4-m rows spaced 80 cm apart. Chemical composition, morphological traits and forage digestibility data were evaluated. The 3BR protocol, with more bioregulator-based applications, resulted in higher canopy (9.78%) and stem (9.58%) compared with control group. The 2BR and 2BR2 treatments provided a 6.5% higher stem than control treatment. The improvement in the nutritional value of Pennisetum purpureum cv. Napier was due to the 17.55% increase in crude protein (CP) content provided by protocol 3BR relative to control group. Treatments 2BR2 and 3BR improved the effective degradability of dry matter (DM). The application of biostimulant protocols increased the potential degradability of neutral detergent fiber (NDF) (+4.1%), with the greatest response seen in treatment 2BR2 in comparison with control treatment. Biostimulant protocols increase the canopy and stem heights and CP content. The application of a bioregulator associated with foliar fertilization and ethylene inhibitor improves the effective degradability of DM and NDF and the potential degradability of NDF in Pennisetum purpureum cv. Napier harvested at 70 days of regrowth.

Keywords


Bioregulators; Degradability; Foliar fertilization; Micronutrients; Senescence.

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References


Abrantes, F. L., Sá, M. E., Souza, L. C. D., Silva, M. P., Simidu, H. M., Andreotti, M.,... Arruda, N. (2011). Uso de regulador de crescimento em cultivares de feijão de inverno. Pesquisa Agropecuária Tropical, 41(2), 148-154. doi: 10.5216/pat.v41i2.8287

Association of Official Analytical Chemists (1995). Official methods of analysis (16nd ed.). Arlington, VA: AOAC.

Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária (2006). Sistema Brasileiro de Classificação de Solos (2a ed.). Rio de Janeiro: Embrapa Solos.

Brennecke, K., Ferraz, F. M., & Simões, T. R. (2015). Germinação de sementes de Brachiaria decumbens sob diferentes concentrações de biorregulador. Revista Acadêmica Ciência Animal, 13(n. cont.), 145-151. doi: 10.7213/academica.13.FC.AO15

Caldas, L. S., Haridasan, P., & Ferreira, M. E. (1990). Meios nutritivos. In A. C. Torres, L. S. Caldas, Técnicas e aplicações da cultura de tecidos de plantas (pp. 37-70). Brasília: ABCTP; Embrapa CNPH.

Cappelle, E. R., Valadares, S. C., Fº., Silva, J. F. C., & Cecon, P. R. (2001). Estimativas do valor energético a partir de características químicas e bromatológicas dos alimentos. Revista Brasileira de Zootecnia, 30(6), 1837-1856. doi: 10.1590/S1516-35982001000700022

Cardona, E. M., Rios, L. A., & Peña, J. D. (2012). Disponibilidad de Variedades de Pastos y Forrajes como Potenciales Materiales Lignocelulósicos para la Producción de Bioetanol en Colombia. Información Tecnológica, 23(6), 87-96. doi: 10.4067/S0718-07642012000600010

Castro, P. R. C., Carvalho, M. E. A., Mendes, A. C. C. M., & Angelini, B. G. (2017). Manual de estimulantes vegetais: nutrientes, biorreguladores, bioestimulantes, bioativadores, fosfitos e biofertilizantes na agricultura tropical. Ouro Fino, MG: Agronômica Ceres.

Chitarra, M. I. F., & Chitarra, A. B. (2005). Pós-colheita de frutos e hortaliças: fisiologia e manuseio (2a ed. Rev. Atual. e Ampl.). Lavras: UFLA.

Cunha, R. G., Lima, S. F., Alvarez, R. D. C. F., Simon, C. A., & Contardi, L. M. (2016). Arranjo espacial e biorregulador de crescimento na produtividade de milho. Revista de Ciências Agroambientais, 14(2), 24-31. doi: 10.5327/rcaa.v14i2.1263

Dantas, A. C. V. L., Queiroz, J. M. O., Vieira, E. L., & Almeida, V. O. (2012). Effect of gibberellic acid and the biostimulant stimulate® on the initial growth of tamarind. Revista Brasileira de Fruticultura, 34(1), 8-14. doi: 10.1590/S0100-29452012000100004

Emerenciano, J. V., Neto, Bezerra, M. G. D. S., França, A. F. D., Aguiar, E. M. D., & Difante, G. D. S. (2019). Características estruturais e produtivas em híbridos intraespecíficos e interespecíficos de capim-elefante. Ciência Animal Brasileira, 20(e-46788), 1-11. doi: 10.1590/1809-6891v20e-46788

Faria, M. B., Morenz, M. J. F., Paciullo, D. S. C., Lopes, F. C. F., & Gomide, C. A. M. (2018). Growth and bromatological characteristics of Brachiaria decumbens and Brachiaria ruziziensis under shading and nitrogen. Revista Ciência Agronômica, 49(3), 529-536. doi: 10.5935/1806-6690.20180060

Ferreira, E. A., Abreu, J. G. D., Martinez, J. C., Braz, T. G. D. S., & Ferreira, D. P. (2018). Cutting ages of elephant grass for chopped hay production. Pesquisa Agropecuária Tropical, 48(3), 245-253. doi: 10.15 90/1983-40632018v4851569

Ferreira, M. M. R., Ferreira, L. H. Z., & Bolonhezi, A. C. (2013). Reguladores vegetais aplicados no sulco de plantio em cultivares de cana-de-açúcar. Scientia Agraria, 14(2), 59-64. doi: 10.5380/rsa.v14i2.40891

Fioreli, A. B., Ziech, M. F., Fluck, A. C., Gerei, J. C., Col, D., Berns, L., & Costa, O. D. (2018). Valor nutritivo de gramíneas do gênero Cynodon consorciadas com amendoim forrageiro. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 70(6), 1970-1978. doi: 10.1590/1678-4162-10048

Galindo, F. S., Buzetti, S., Teixeira, M. C. M., Fº., Dupas, E., & Carvalho, F. D. C. (2018). Manejo da adubação nitrogenada no capim-mombaça em função de fontes e doses de nitrogênio. Revista de Ciências Agrárias, 41(4), 31-40. doi: 10.19084/RCA18131

Hall, M. B., Hoover, W. H., Jennings, J. P., & Webster, T. K. M. (1999). A method for partitioning neutral detergent-soluble carbohydrates. Journal of Science Food and Agriculture, 79(15), 2079-2086. doi: 10.1002/(SICI)1097-0010(199912)79:15<2079::AID-JSFA502>3.0.CO;2-Z

Harper, J. E. (1984). Uptake of organic nitrogen forms by roots and leaves. In R. D. Hauck (Ed.), Nitrogen in crop production (pp. 165-170). Wisconsin: American Society of Agronomy.

Instituto Nacional de Meteorologia (2019). Estações e dados/dados metereológicos. Recuperado de http://www.inmet.gov.br/portal/index.php?r=estacoes/estacoesAutomaticas

Jannin, L., Arkoun, M., Etienne, P., Laîné, P., Goux, D., Garnica, M., & Houdusse, F. (2013). Brassica napus growth is promoted by Ascophyllum nodosum seaweed extract: microarray analysis and physiological characterization of N, C, and S metabolisms. Journal of Plant Growth Regulation, 32(1), 31-52. doi: 10. 1007/s00344-012-9273-9

Jannin, L., Arkoun, M., Ourry, A., Laîné, P., Goux, D., Garnica, M., & Houdusse, F. (2012). Microarray analysis of humic acid effects on Brassica napus growth: involvement of N, C and S metabolisms. Plant and Soil, 359(1-2), 297-319. doi: 10.1007/s11104-012-1191-x

Khan, W., Rayirath, U. P., Subramanian, S., Jithesh, M. N., Rayorath, P., Hodges, D. M., & Prithiviraj, B. (2009). Seaweed extracts as biostimulants of plant growth and development. Journal of Plant Growth Regulation, 28(4), 386-399. doi: 10.1007/s00344-009-9103-x

Krouk, G. (2016). Hormones and nitrate: a two-way connection. Plant Molecular Biology, 91(6), 599-606. doi: 10.1007/s11103-016-0463-x

Mehez, A. Z., & Orskov, E. R. (1977). A study of the artificial fibre bag technique for determining the digestibility of feeds in the rumen. Journal of Agricultural Science, 88(3), 645-650. doi: 10.1017/S0021859600037321

Minson, D. J. (1990). Forage in ruminant nutrition. San Diego: Academic Press.

Morais, R. F., Souza, B. J., Leite, J. M., Soares, L. H. B., Alves, B. J. R., Boddey, R. M., & Urquiaga, S. (2009). Elephant grass genotypes for bioenergy production by direct biomass combustion. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 44(2), 133-140. doi: 10.1590/S0100-204X2009000200004

Mortate, R. K., Nascimento, E. F., Gonçalves, E. G. S., & Lima, M. W. P. (2018). Resposta do milho (Zea mays L.) à adubação foliar e via solo de nitrogênio. Revista de Agricultura Neotropical, 5(1), 1-6. doi: 10.32404/rean.v5i1.2202

Nardi, S., Pizzeghello, D., Schiavon, M., & Ertani, A. (2016). Plant biostimulants: physiological responses induced by protein hydrolyzed-based products and humic substances in plant metabolism. Scientia Agricola, 73(1), 18-23. doi: 10.1590/0103-9016-2015-0006

Oliveira, W. F., Lima, E. M., Gomes, D. I., Alves, K. S., Santos, P. M., Azevedo, G. S., & Mezzomo, R. (2019). Agronomic performance of Marandu grass treated with plant growth biostimulants in the Amazon biome. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 71(2), 603-612. doi: 10.1590/1678-4162-10369

Orskov, E. R., & McDonald, I. (1979). The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science, 92(2), 499-503. doi: 10.1017/S0021859600063048




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